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Oct3/4 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-422357-ACT | 20 µg | $397.00 |
Pou5f1 kodiert den murinen POU-Domänen-Transkriptionsfaktor Oct3/4, einen Masterregulator der Pluripotenz und früher embryonaler Linienentscheidungen. Oct3/4 koordiniert gemeinsam mit zentralen Stemness-Faktoren wie Sox2 und Nanog Transkriptionsprogramme, um Selbsterneuerung aufrechtzuerhalten und Differenzierung zu unterdrücken, und integriert dabei Signale aus Signalwegen wie LIF/STAT3, WNT/β‑Catenin und TGF‑β/SMAD. Eine veränderte Oct3/4-Expression ist mit gestörten Entwicklungspfaden verknüpft und wird in der Krebsbiologie häufig als molekularer Marker stammzellähnlicher Zustände verwendet, wobei fehlregulierte Pluripotenz-Netzwerke zur Tumorheterogenität beitragen können. Entsprechend steht Pou5f1/Oct3/4 im Zentrum von Studien zur Reprogrammierung, epigenetischen Regulation und Stabilität von Zellschicksalen in murinen Modellsystemen.
Oct3/4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Pou5f1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Oct3/4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Pou5f1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Pou5f1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Oct3/4-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Pou5f1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Oct3/4-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Oct3/4-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Pou5f1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.