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O-GlcNAc transferase CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400717-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane OGT-Gen kodiert die O-GlcNAc-Transferase, das zentrale Enzym, das die O‑verknüpfte β‑N‑Acetylglucosamin-(O‑GlcNAc)-Modifikation von Serin-/Threoninresten an nukleären und zytoplasmatischen Proteinen katalysiert. Diese dynamische posttranslationale Modifikation verknüpft die Nährstoffsensorik über den Hexosamin-Biosyntheseweg mit Transkriptionsregulation, Chromatin-Remodeling, Zellzykluskontrolle und Stressantwort-Signalgebung. Die OGT-abhängige O‑GlcNAcylierung moduliert wichtige Regulatoren wie RNA-Polymerase II, c‑Myc, p53 und NF‑κB, prägt die Proteostase und vermittelt Signal-Crosstalk mit der Phosphorylierung. Eine fehlregulierte OGT-Aktivität und das globale O‑GlcNAc-Turnover wurden mit Krebsbiologie, metabolischen Dysfunktionen, Neurodegeneration und veränderter Immun-Signalgebung in Verbindung gebracht und unterstreichen die breite Relevanz für mechanistische Studien.
O-GlcNAc transferase Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen OGT-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
O-GlcNAc transferase Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des OGT-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der OGT-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen O-GlcNAc transferase-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native OGT-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von O-GlcNAc transferase-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des O-GlcNAc transferase-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem OGT-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.