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Noggin CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402090-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane NOG-Gen kodiert Noggin, ein sezerniertes Cystin-Knoten-Glykoprotein, das als hochaffiner Antagonist von Liganden der BMP-Familie (u. a. BMP2, BMP4 und BMP7) wirkt und dadurch die SMAD1/5/8-Signalübertragung begrenzt. Durch die Sequestrierung von BMPs trägt Noggin zur Regulation der embryonalen Musterbildung, der osteochondrogenen Differenzierung und der Gewebemorphogenese bei, mit nachgeschalteten Effekten auf Zellschicksalsentscheidungen und Programme der extrazellulären Matrix. Eine veränderte NOG-Gen-Dosierung oder -Aktivität ist mit entwicklungsbedingten Skelettphänotypen und angeborenen Fehlbildungen verbunden, die die Gelenkbildung sowie die kraniofaziale oder Gliedmaßen-Musterbildung betreffen, was eine dysregulierte BMP-Signalwegaktivität widerspiegelt. In vitro dient NOG als zentraler Knotenpunkt zur Untersuchung des Crosstalks zwischen BMP- und TGF-β-Signalwegen während der Differenzierung und bei morphogengesteuerten Signalgradienten.
Noggin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NOG-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Noggin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NOG-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NOG-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Noggin-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NOG-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Noggin-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Noggin-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NOG-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.