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Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404001-ACT | 20 µg | $397.00 |
CHRND kodiert die Delta‑Untereinheit des muskeltypischen nikotinischen Acetylcholinrezeptors (nAChR), eines ligandengesteuerten Ionenkanals, der an der neuromuskulären Endplatte assembliert und eine schnelle synaptische Signalübertragung vermittelt. Nach Bindung von Acetylcholin öffnet sich der Rezeptor und ermöglicht den Einstrom von Kationen; dadurch wird die Neurotransmission mit Membrandepolarisation sowie den Erregungs‑Kontraktions‑Prozessen gekoppelt. CHRND trägt zur Rezeptorassemblierung, zur Kanalöffnung/-steuerung (Gating) und zur postsynaptischen Stabilität innerhalb cholinerger Signalwege bei. Eine veränderte Zusammensetzung oder Funktion von nAChR‑Untereinheiten ist für Störungen der neuromuskulären Übertragung relevant, was den Einsatz in Studien zur Synapsenbiologie und Rezeptorbiogenese unterstützt.
Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CHRND-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CHRND-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CHRND-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CHRND-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Nicotinic Acetylcholine Receptor delta/CHRND-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CHRND-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.