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mGluR-4 Double Nickase Plasmid (h) | sc-404894-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
mGluR-4 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404894-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GRM4 kodiert den metabotropen Glutamatrezeptor 4 (mGluR-4), einen GPCR der Klasse C, der vorwiegend an Gi/o-Proteine koppelt, um die Adenylylcyclase-Aktivität zu dämpfen und das intrazelluläre cAMP zu senken. mGluR-4 ist an präsynaptischen Stellen angereichert, wo er die Neurotransmitterfreisetzung moduliert und so die synaptische Transmission und Plastizität über cAMP/PKA-Signalwege sowie nachgeschaltete Effekte auf Ionenkanalfunktionen und den Vesikelzyklus formt. Durch die Feinabstimmung der Aktivität exzitatorischer und inhibitorischer Schaltkreise wird GRM4 in Signalwegen untersucht, die im zentralen Nervensystem die motorische Kontrolle, die sensorische Verarbeitung und die neuroimmunologische Signalübertragung steuern. Eine fehlregulierte glutamaterge Signalgebung unter Beteiligung von GRM4 wurde im Zusammenhang mit der Biologie neuropsychiatrischer und neurodegenerativer Erkrankungen untersucht, was seinen Einsatz als molekularen Ansatzpunkt für mechanistische Studien synaptischer und schaltkreisbezogener Phänotypen stützt.
mGluR-4 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GRM4-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GRM4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GRM4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GRM4-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.