Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
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MATH-1 Double Nickase Plasmid (h): sc-404171-NIC
- Zielspezies: human
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das MATH-1 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- MATH-1 Double-Nickase-Plasmid (h) und MATH-1 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf ATOH1 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: MATH-1: sc-136173
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
MATH-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-404171-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
MATH-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404171-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ATOH1 kodiert den menschlichen basischen Helix-Loop-Helix-Transkriptionsfaktor MATH-1, einen schicksalsbestimmenden Regulator, der Programme der neuronalen und sensorischen Zelldifferenzierung antreibt. MATH-1 integriert entwicklungsbiologische Signaleingänge, darunter Notch- und Wnt/β-Catenin-assoziierte transkriptionelle Netzwerke, um in neuroepithelialen Kontexten die Festlegung des Zellschicksals, den Ausstieg aus dem Zellzyklus und die Reifung zu koordinieren. Eine fehlregulierte ATOH1-Expression oder -Aktivität wurde in mehreren Krebsarten mit veränderten Differenzierungszuständen und der Kontrolle der Proliferation in Verbindung gebracht, und ATOH1 wird breit in Modellen der Neuroentwicklung und der Biologie sensorischer Organe untersucht. Als transkriptioneller Knotenpunkt wird ATOH1 häufig genutzt, um genregulatorische Schaltkreise zu analysieren, die die Aufrechterhaltung von Vorläuferzellen gegenüber der terminalen Differenzierung steuern.
MATH-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ATOH1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ATOH1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ATOH1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ATOH1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.