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Lsk Double Nickase Plasmid (h) | sc-403533-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Lsk Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403533-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
MATK kodiert die Nicht-Rezeptor-Tyrosinkinase Lsk, einen zytoplasmatischen Signalregulator, der insbesondere in hämatopoetischen und epithelialen Kontexten angereichert ist. Lsk moduliert phosphorylierungsabhängige Netzwerke, die sich mit Src-Familienkinasen und rezeptornaher Signalübertragung überschneiden, und beeinflusst dadurch Prozesse wie die Kontrolle des Zellwachstums, Differenzierung und stressresponsive Signalwege. MATK wird mit der Feinabstimmung kinasegetriebener Signalwege in Verbindung gebracht, die für onkogene Signalzustände relevant sind, und ist damit ein nützliches Ziel zur Untersuchung fehlregulierter Phosphorylierungs-Schaltkreise in der Krebsbiologie und in Modellen der Linien-/Zellschicksalsspezifikation. Die Aufklärung der MATK-Funktion unterstützt mechanistische Analysen von Kinase-Crosstalk und Pathway-Rewiring in menschlichen Zellen.
Lsk Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des MATK-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von MATK abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die MATK-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit MATK-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.