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LPAAT-β Double Nickase Plasmid (h) | sc-405045-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LPAAT-β Double Nickase Plasmid (h2) | sc-405045-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
AGPAT2 kodiert die Lysophosphatidsäure-Acyltransferase-β (LPAAT-β), ein mit dem endoplasmatischen Retikulum assoziiertes Enzym, das die Acylierung von Lysophosphatidsäure zu Phosphatidsäure katalysiert – einem zentralen Zwischenprodukt der Biosynthese von Glycerophospholipiden und Triacylglycerolen. Durch die Steuerung der Verfügbarkeit von Phosphatidsäure beeinflusst LPAAT-β die Membranbiogenese, die Bildung von Lipidtröpfchen sowie Lipid-Signalknotenpunkte, die mit der Phospholipid-Remodellierung und Energiespeicherwegen verknüpft sind. Die AGPAT2-Aktivität ist eng mit der Lipidhomöostase von Adipozyten und einer übergeordneten metabolischen Regulation verbunden; Störungen dieses Signalwegs stehen in Zusammenhang mit schweren Lipodystrophie-Phänotypen und metabolischen Dysfunktionen im Kontext von Insulinresistenz. Entsprechend wird AGPAT2 häufig in Zusammenhängen wie Adipogenese, lipidischem Organellenfluss und lipidvermittelter Regulation zellulärer Stressantworten untersucht.
LPAAT-β Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des AGPAT2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von AGPAT2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die AGPAT2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit AGPAT2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.