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LONP1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-411273-NIC | 20 µg | $410.00 |
LONP1 kodiert eine ATP-abhängige Protease der mitochondrialen Matrix (LonP1), die die Proteostase aufrechterhält, indem sie fehlgefaltete oder oxidativ geschädigte Proteine erkennt, entfaltet und abbaut. Sie unterstützt die mitochondriale Qualitätskontrolle, die Aufrechterhaltung der mtDNA sowie die mitochondriale Unfolded-Protein-Response und beeinflusst dadurch die Effizienz der oxidativen Phosphorylierung, den Umgang mit ROS und stressadaptive Signalwege. Die Funktion von LONP1 überschneidet sich mit Prozessen der mitochondrialen Biogenese und der Mitophagie, die unter metabolischem oder proteotoxischem Stress die Organellintegrität bewahren. Eine fehlregulierte LONP1-Aktivität wurde mit Phänotypen mitochondrialer Dysfunktion in Verbindung gebracht und wird im Kontext von Neurodegeneration, kardiometabolischem Stress und der Anpassung von Tumorzellen an veränderte Bioenergetik untersucht.
LONP1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LONP1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LONP1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LONP1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LONP1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.