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LMO3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-417939-NIC | 20 µg | $410.00 |
LMO3 kodiert einen ausschließlich aus LIM-Domänen bestehenden transkriptionellen Regulator, der überwiegend aus LIM-Zinkbindungsdomänen besteht, die als Module für Protein-Protein-Interaktionen fungieren und nicht als direkte DNA-Bindemotive. Durch die Assemblierung von Multiproteinkomplexen mit Transkriptionsfaktoren und Kofaktoren trägt LMO3 zur Ausprägung von Genexpressionsprogrammen bei, die mit neuronaler Differenzierung, Axonführung sowie der kontextabhängigen Kontrolle von Proliferation und Überleben verknüpft sind. Eine dysregulierte LMO3-Expression wurde in mehreren Tumorkontexten beschrieben, darunter Neuroblastom und andere solide Tumoren, wo sie häufig mit veränderten Differenzierungszuständen und invasiven Phänotypen assoziiert ist. Diese Eigenschaften machen LMO3 zu einem nützlichen Ziel für die Untersuchung entwicklungsbezogener transkriptioneller Netzwerke, onkogener Reprogrammierung und von Mechanismen der Linienfestlegung.
LMO3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LMO3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LMO3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LMO3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LMO3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.