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LI-cadherin Double Nickase Plasmid (h) | sc-401229-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LI-cadherin Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401229-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CDH17 kodiert LI‑Cadherin, ein im Darm stark exprimiertes, calciumabhängiges Zell‑Zell‑Adhäsionsmolekül aus der Cadherin‑Superfamilie, das den epithelialen Zusammenhalt und die Polarität unterstützt. Im Gegensatz zu klassischen Cadherinen besitzt LI‑Cadherin eine eigenständige extrazelluläre Architektur und kann die Organisation von Zellkontakten, die Barrierefunktion sowie Differenzierungsprogramme in gastrointestinalen Epithelien beeinflussen. Die von CDH17 abhängige Adhäsionsdynamik greift in Signalwege ein, die die epitheliale Architektur und Motilität steuern, einschließlich Wechselwirkungen mit der Umgestaltung des Zytoskeletts und durch Wnt/β‑Catenin regulierten transkriptionellen Zuständen. Eine fehlregulierte LI‑Cadherin‑Expression wurde bei mehreren gastrointestinalen Pathologien beschrieben und wird in der Krebsbiologie häufig als Marker der epithelialen Linienzugehörigkeit und veränderter Gewebeorganisation untersucht.
LI-cadherin Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CDH17-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CDH17 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CDH17-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CDH17-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.