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L-type Ca++ CP α1C Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-401062-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
L-type Ca++ CP α1C Plasmide di attivazione CRISPR (h2) | sc-401062-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
CACNA1C codifica la subunità α1C, formante il poro, del canale del Ca2+ di tipo L CaV1.2, uno dei principali mediatori dell’ingresso di calcio voltaggio-dipendente nelle cellule umane eccitabili e non eccitabili. L’apertura del canale accoppia la depolarizzazione di membrana alla segnalazione intracellulare del Ca2+, modellando l’accoppiamento eccitazione–contrazione, l’attività pacemaker e la trascrizione dipendente dall’attività attraverso vie quali CaM/CaMK e calcineurina–NFAT. L’ingresso di calcio dipendente da CaV1.2 regola inoltre la dinamica del rilascio di neurotrasmettitori e la plasticità sinaptica tramite effettori sensibili al calcio e programmi di espressione genica a valle. La variabilità genetica o una deregolazione dell’espressione di CACNA1C sono state associate ad alterazioni dell’elettrofisiologia e dell’omeostasi del calcio in contesti di patologie cardiovascolari e neuropsichiatriche, a supporto del suo impiego in studi meccanicistici della segnalazione e dell’eccitabilità cellulare.
L-type Ca++ CP α1C Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di CACNA1C senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
L-type Ca++ CP α1C Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus CACNA1C nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione CACNA1C, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di L-type Ca++ CP α1C. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus CACNA1C nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da L-type Ca++ CP α1C nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via L-type Ca++ CP α1C nelle cellule tumorali con espressione di CACNA1C silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.