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KV4.2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402801-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
KV4.2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402801-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
KCND2 kodiert die spannungsabhängige Kaliumkanal‑Untereinheit KV4.2, einen zentralen Vermittler schnell inaktivierender A‑Typ‑K+-Ströme, die die Repolarisation des Aktionspotentials, die Entladungsfrequenz und die dendritische Erregbarkeit in erregbaren Zellen prägen. Die Funktion von KV4.2 wird durch den Zusammenbau des Kanalkomplexes und durch Signaleingänge reguliert, darunter Phosphorylierung sowie Interaktionen mit Hilfsproteinen, die Gating, Transport (Trafficking) und Membranlokalisation feinabstimmen. Durch die Kontrolle von Erregbarkeit und synaptischer Integration trägt KCND2 zu aktivitätsabhängiger neuronaler Signalübertragung und zu für die kardiale Elektrophysiologie relevanten Repolarisationsdynamiken bei. Eine veränderte KCND2/KV4.2‑Expression oder veränderte Kanaleigenschaften wurden mit Störungen der elektrischen Signalübertragung in Verbindung gebracht, darunter neuroentwicklungsbezogene und anfallsassoziierte Phänotypen sowie in elektrophysiologisch ausgerichteten Studien eine mit Arrhythmien verknüpfte Anfälligkeit.
KV4.2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des KCND2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von KCND2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die KCND2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit KCND2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.