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KIBRA CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402677-ACT | 20 µg | $397.00 |
WWC1 kodiert KIBRA, ein in Gehirn und Niere angereichertes Scaffold-Protein, das über WW-Domänen und PDZ-Bindungsinteraktionen die Signalübertragung an der Zellrinde und an Synapsen koordiniert. KIBRA ist an der Regulation des Hippo-Signalwegs beteiligt, indem es die Aktivität von LATS1/2 sowie YAP/TAZ-abhängige Transkriptionsprogramme moduliert und dadurch Zellpolarität, Proliferation und Mechanotransduktion mit der transkriptionellen Kontrolle verknüpft. Außerdem interagiert es mit Regulatoren des Transports und des Aktin-Zytoskeletts, beeinflusst so Membrandynamik und synaptische Plastizität und wird mit Signalwegen in Verbindung gebracht, die Lernen und Gedächtnis betreffen. Veränderte WWC1-/KIBRA-Expression oder -Signalgebung wurde mit neurokognitiven Phänotypen und einer fehlregulierten Wachstumskontrolle assoziiert, die für die Onkologie und andere komplexe Krankheitsmodelle relevant ist.
KIBRA Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen WWC1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
KIBRA Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des WWC1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der WWC1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen KIBRA-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native WWC1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von KIBRA-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des KIBRA-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem WWC1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.