Date published: 2026-9-3

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JWA CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h): sc-406231

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • JWA Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im JWA-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
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    JWA CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h)

    sc-406231
    20 µg
    $397.00

    Übersicht

    ARL6IP5 kodiert JWA, ein stressresponsives, membranassoziiertes Protein, das an der Regulation der Zytoskelettorganisation, der Zelladhäsion und des vesikulären Transports beteiligt ist. JWA wurde mit der Modulation der MAPK-Signalübertragung und oxidativer Stressantworten in Verbindung gebracht und beeinflusst dadurch Prozesse wie Migration, Proliferation und Apoptose. In menschlichen Zellen wurde eine veränderte JWA-Expression mit fehlregulierter inflammatorischer Signalgebung und der Tumorbiologie assoziiert, was JWA für mechanistische Studien zur Krebsprogression, metastaseassoziierten Phänotypen und zur zellulären Anpassung an Stress relevant macht.

    Das JWA CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des ARL6IP5-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des ARL6IP5-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.

    Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von ARL6IP5 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die JWA-Proteinexpression aufheben.

    Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von ARL6IP5-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der JWA-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.

    Hauptmerkmale

    • sgRNAs, die auf ARL6IP5-Exone abzielen, die für die JWA-Funktion entscheidend sind
      Ko-Expression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid zur vereinfachten Verabreichung
      GFP-Reporter zur Identifizierung transfizierter Zellen
      Pool von Plasmiden, die auf mehrere ARL6IP5-Genomstellen abzielen, um die Knockout-Effizienz zu verbessern
      Kompatibel mit der Verabreichung durch Transfektion

    Designvarianten

    CRISPRs +/- HDRs

    • gRNAs, die vom JWA CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) und vom JWA CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) kodiert werden, zielen auf unterschiedliche Stellen innerhalb des ARL6IP5-Lokus ab. Es kann ein oder beide Targeting-Designs verfügbar sein. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.
      HDR-Donorkonstrukte, kodiert durch das JWA HDR-Plasmid (h) und JWA HDR-Plasmid (h2) kodiert, enthalten eine Puromycin-Resistenzkassette und einen RFP-Reporter, flankiert von ARL6IP5-Homologiearmen, um die homologe Reparatur an definierten ARL6IP5-Zielstellen entsprechend den CRISPR/Cas9-KO-Designs zu unterstützen. Die Verfügbarkeit von HDR-Donoren kann variieren. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.