Date published: 2026-7-11

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Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h2): sc-400546-KO-2

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Integrin α5/ITGA5/CD49e Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (h2) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im Integrin α5/ITGA5/CD49e-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • Integrin α5/ITGA5/CD49e HDR-Plasmid (h2) (sc-400546-HDR-2) wird für die Co-Transfektion mit dem Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) empfohlen, um die Selektion erfolgreich editierter Zellen durch HDR-vermittelte Integration einer Puromycin-Resistenzkassette und eines RFP-Reportergens zu ermöglichen
  • Das Integrin α5/ITGA5/CD49e HDR-Plasmid (h2) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes eine HDR-Matrize (Homology-Directed Repair) enthält, die den gRNA-Zielstellen im Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) entspricht
  • Jedes HDR-Plasmid enthält zwei ~800 bp lange Homologiearme, die die Puromycin-Resistenz- und RFP-Kassetten flankieren und so konzipiert sind, dass sie an genomische DNA-Sequenzen binden, die die durch Cas9 induzierte Doppelstrangbruchstelle umgeben, und eine präzise HDR-vermittelte Integration ermöglichen
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: Integrin α5/ITGA5/CD49e: sc-376199
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    Bestellinformation

    ProduktKatalog #EINHEITPreisANZAHLFavoriten

    Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h2)

    sc-400546-KO-2
    20 µg
    $397.00

    Integrin α5/ITGA5/CD49e HDR Plasmid (h2)

    sc-400546-HDR-2
    20 µg
    $445.00

    Übersicht

    ITGA5 kodiert Integrin α5 (CD49e), das mit Integrin β1 ein Heterodimer bildet und so den α5β1‑Fibronectinrezeptor bildet, der die Bindung an die extrazelluläre Matrix mit intrazellulärer Signalübertragung koppelt. Die Ligandenbindung fördert den Aufbau fokaler Adhäsionen und aktiviert FAK/SRC-, PI3K–AKT- und MAPK-Signalwege, die adhäsionsabhängiges Überleben, Migration, Zytoskelettorganisation und Mechanotransduktion regulieren. ITGA5 trägt zum Umbau der extrazellulären Matrix sowie zur Signal‑Wechselwirkung mit Wachstumsfaktorrezeptoren bei und beeinflusst dadurch Prozesse wie die epithelial–mesenchymale Transition, Angiogenese und Wundheilung. Eine fehlregulierte ITGA5-Expression oder -Signalgebung wird mit Fibrose, entzündlichem Remodeling sowie Tumorzellinvasion und Metastasierung in Verbindung gebracht, weshalb ITGA5 in Krankheitsmodellen häufig als zentraler Ansatzpunkt zur Untersuchung von Zell–Matrix‑Interaktionen genutzt wird.

    Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des ITGA5-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des ITGA5-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.

    Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.

    Homology-Directed Repair (HDR)-Donor — Puromycin-Kassette mit RFP-Reporter

    Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das Integrin α5/ITGA5/CD49e HDR-Plasmid (h2) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte ITGA5 Zielstelle spezifisch sind.
    Bei Co-Transfektion mit dem Integrin α5/ITGA5/CD49e CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2):

    • Die PuroR-RFP-Kassette integriert sich über HDR an der Cas9-Schnittstelle und unterbricht dabei das ITGA5 offene Lesegerüst.
      Die RFP-Fluoreszenz liefert einen unmittelbaren visuellen Hinweis auf eine erfolgreiche Integration und ermöglicht die fluoreszenzbasierte Identifizierung oder Sortierung editierter Zellen vor oder parallel zur Puromycin-Selektion.
      Erfolgreich editierte Zellen werden durch Puromycin-Resistenz bestätigt, was den Aufwand für das Klon-Screening erheblich reduziert.
      Diese Selektionsstrategie eignet sich ideal zur Erzeugung stabiler, klonaler KO-Zelllinien für nachgelagerte Funktionsstudien, Wirkstoffscreenings oder die Modellentwicklung.

    Cre-lox-Kassetten-Entfernungssystem

    Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des ITGA5-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
    Dieser zweistufige Ansatz:

    • Minimiert Störungen der lokalen Chromatinarchitektur und benachbarter regulatorischer Elemente
      Stellt einen nahezu nativen genomischen Kontext am editierten Locus wieder her
      Ermöglicht die Wiederverwendung der Puromycin-Selektionsstrategie in derselben Zelllinie für weitere Editierungen

    Hauptmerkmale

    • gRNA, die auf ITGA5 Exon(e) abzielt, die für die Integrin α5/ITGA5/CD49e Funktion entscheidend sind
      Koexpression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid für eine vereinfachte Verabreichung
      HDR-Donor mit Puromycin-Resistenz für die positive Klonselektion
      loxP-flankierte PuroR-Kassette mit Cre-Rekombinase-Vektor für die nahtlose Markerentfernung
      Wird gebrauchsfertig für die Verabreichung durch Transfektion geliefert

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.