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Integrin α1/ITGA1/CD49a Double Nickase Plasmid (h) | sc-401275-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Integrin α1/ITGA1/CD49a Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401275-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ITGA1 kodiert Integrin α1 (CD49a), das mit Integrin β1 zu einem Heterodimer assoziiert und so den α1β1‑Kollagen/Laminin‑Rezeptor bildet, der die Zell–Extrazellulärmatrix‑Adhäsion sowie bidirektionale Signalübertragung vermittelt. Über die Kopplung an Fokaladhäsionskomplexe und Signalwege wie FAK/Src, PI3K–AKT und MAPK beeinflusst ITGA1 die Umgestaltung des Zytoskeletts, Migration, Überleben und Mechanotransduktion. CD49a wird in mehreren Gewebekompartimenten und Immunzellsubsets exprimiert und unterstützt Prozesse wie Gewebsresidentz, die Adhäsion an Basalmembranen und eine matrixabhängige Differenzierung. Eine Fehlregulation der ITGA1‑Signalgebung und veränderte Zell–Matrix‑Interaktionen wurden mit Fibrose, Entzündung sowie Tumorzellinvasion und Metastasierung in Verbindung gebracht, wodurch ITGA1 ein nützlicher Ansatzpunkt für die Untersuchung adhäsionsgetriebener Phänotypen ist.
Integrin α1/ITGA1/CD49a Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ITGA1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ITGA1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ITGA1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ITGA1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.