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IL-6 Double Nickase Plasmid (m) | sc-421114-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
IL-6 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-421114-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Interleukin-6 (IL-6), kodiert durch das Mausgen *Il6*, ist ein pleiotropes Zytokin, das Akute-Phase-Reaktionen, die Differenzierung von Immunzellen und inflammatorische Signalübertragung über hämatopoetische und stromale Kompartimente hinweg koordiniert. IL-6 bindet an den IL-6R und den Korezeptor gp130 und aktiviert dadurch die JAK/STAT3-Signalgebung; zusätzlich besteht eine Kopplung an MAPK- sowie PI3K/AKT-Signalwege, die Überlebens-, Proliferations- und Stoffwechselprogramme prägen. Eine dysregulierte IL-6-Produktion wird häufig als mechanistischer Readout der Aktivierung des angeborenen Immunsystems und der Umgestaltung von Zytokinnetzwerken in Modellen chronischer Entzündung, Autoimmunität, Infektion und tumorassoziierter Inflammation verwendet. In Mausmodellen wird eine gezielte Beeinflussung von *Il6* oft eingesetzt, um Makrophagenpolarisierung, T‑Zell‑Effektorprogrammierung sowie das Zusammenspiel zwischen Entzündungssignalen und Gewebereparatur zu untersuchen.
IL-6 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Il6-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Il6 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Il6-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Il6-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.