IL-3/IL-5/GM-CSFRβ CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h): sc-401045

Übersicht

CSF2RB kodiert die gemeinsame Beta-Kette (βc), die von den Rezeptoren für Interleukin‑3 (IL‑3), Interleukin‑5 (IL‑5) und den Granulozyten‑Makrophagen-Kolonie-stimulierenden Faktor (GM‑CSF) geteilt wird, und bildet eine zentrale Signaluntereinheit, die für hochaffine Zytokinrezeptorkomplexe erforderlich ist. Nach Ligandenbindung aktiviert die βc‑abhängige Signalübertragung JAK2/STAT5 sowie die PI3K‑AKT‑ und RAS‑MAPK‑Signalwege und reguliert damit Überleben, Proliferation und Differenzierung hämatopoetischer Zellen sowie die funktionelle Priming‑Phase myeloider Linien. In immunologischen und hämatopoetischen Kontexten beeinflusst CSF2RB die Biologie von Eosinophilen und Granulozyten, Programme der Makrophagenaktivierung und zytokingetriebene entzündliche Antworten. Eine fehlregulierte βc‑Signalgebung oder eine veränderte Rezeptorzusammensetzung wurde mit aberranter Myelopoese und Mechanismen entzündlicher Erkrankungen in Verbindung gebracht, wodurch CSF2RB ein relevantes Ziel für Signalweg‑ und Zellzustandsstudien in humanen Systemen darstellt.

IL-3/IL-5/GM-CSFRβ CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des CSF2RB-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des CSF2RB-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.

Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.

Homology-Directed Repair (HDR)-Donor — Puromycin-Kassette mit RFP-Reporter

Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das IL-3/IL-5/GM-CSFRβ HDR-Plasmid (h) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte CSF2RB Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem IL-3/IL-5/GM-CSFRβ CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h):

• Die PuroR-RFP-Kassette integriert sich über HDR an der Cas9-Schnittstelle und unterbricht dabei das CSF2RB offene Lesegerüst.
  Die RFP-Fluoreszenz liefert einen unmittelbaren visuellen Hinweis auf eine erfolgreiche Integration und ermöglicht die fluoreszenzbasierte Identifizierung oder Sortierung editierter Zellen vor oder parallel zur Puromycin-Selektion.
  Erfolgreich editierte Zellen werden durch Puromycin-Resistenz bestätigt, was den Aufwand für das Klon-Screening erheblich reduziert.
  Diese Selektionsstrategie eignet sich ideal zur Erzeugung stabiler, klonaler KO-Zelllinien für nachgelagerte Funktionsstudien, Wirkstoffscreenings oder die Modellentwicklung.

Cre-lox-Kassetten-Entfernungssystem

Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des CSF2RB-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:

• Minimiert Störungen der lokalen Chromatinarchitektur und benachbarter regulatorischer Elemente
  Stellt einen nahezu nativen genomischen Kontext am editierten Locus wieder her
  Ermöglicht die Wiederverwendung der Puromycin-Selektionsstrategie in derselben Zelllinie für weitere Editierungen

Hauptmerkmale

• gRNA, die auf CSF2RB Exon(e) abzielt, die für die IL-3/IL-5/GM-CSFRβ Funktion entscheidend sind
  Koexpression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid für eine vereinfachte Verabreichung
  HDR-Donor mit Puromycin-Resistenz für die positive Klonselektion
  loxP-flankierte PuroR-Kassette mit Cre-Rekombinase-Vektor für die nahtlose Markerentfernung
  Wird gebrauchsfertig für die Verabreichung durch Transfektion geliefert

Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.