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IL-2Rβ CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403250-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
IL-2Rβ CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-403250-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
IL2RB kodiert die humane Beta-Kette des Interleukin‑2‑Rezeptors (IL‑2Rβ; CD122), eine Signalkomponente, die von den Rezeptorkomplexen für IL‑2 und IL‑15 gemeinsam genutzt wird und für die Aktivierung und Homöostase von Lymphozyten essenziell ist. Nach Bindung des Zytokins arbeitet IL‑2Rβ mit IL2RG und IL2RA/IL15RA zusammen, um JAK1/JAK3‑abhängige Phosphorylierungskaskaden auszulösen, die STAT5 aktivieren und mit den PI3K‑AKT‑ und MAPK‑Signalwegen verknüpft sind. Diese Signalübertragung koordiniert Proliferation, Differenzierung und Überleben von T‑Zellen sowie Entwicklung und Effektorfunktion von NK‑Zellen. Eine dysregulierte Aktivität oder Expression von IL2RB kann Immuntoleranz und zytotoxische Antworten stören, weshalb es häufig als zentraler Ansatzpunkt in mechanistischen Studien zur Immunregulation und zur Biologie entzündlicher Erkrankungen genutzt wird.
IL-2Rβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL2RB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-2Rβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL2RB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL2RB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-2Rβ-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL2RB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-2Rβ-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-2Rβ-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL2RB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.