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IL-1RAcP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402026-ACT | 20 µg | $397.00 |
IL1RAP kodiert das Interleukin‑1‑Rezeptor‑Zubehörprotein (IL‑1RAcP), einen essenziellen Korezeptor, der mit IL1R1 oder IL1RL1 (ST2) Heterodimere bildet, um die durch Zytokine der IL‑1‑Familie ausgelöste Signalübertragung weiterzuleiten. Nach Ligandenbindung unterstützt IL‑1RAcP den Aufbau des Rezeptorkomplexes und die Rekrutierung von Adapterproteinen wie MyD88, wodurch IRAK‑abhängige Kaskaden initiiert werden, die NF‑κB‑ und MAPK‑Signalwege aktivieren und so die Expression inflammatorischer Gene regulieren. Diese Signalachse beeinflusst die Aktivierung der angeborenen Immunität, die Zytokinproduktion und die Wechselwirkungen mit inflammasomgetriebenen Antworten. Eine fehlregulierte, IL1RAP‑assoziierte Signalübertragung wird häufig im Kontext chronischer Entzündung und der immunkomodulatorischen Effekte des Tumormikromilieus untersucht und ist daher für mechanistische Studien in Immunologie‑ und Onkologie‑Modellen relevant.
IL-1RAcP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL1RAP-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-1RAcP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL1RAP-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL1RAP-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-1RAcP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL1RAP-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-1RAcP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-1RAcP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL1RAP-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.