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IL-17 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400293-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
IL-17 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400293-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Humanes **IL17A** kodiert **IL‑17A (IL‑17)**, ein proinflammatorisches Zytokin, das überwiegend von Th17‑Zellen und anderen angeborenen, lymphozytenähnlichen Zelltypen produziert wird und Gewebe‑Immunantworten verstärkt. IL‑17A signalisiert über den **IL‑17RA/IL‑17RC**‑Rezeptorkomplex und aktiviert **ACT1/TRAF6**‑abhängige Signalkaskaden, die **NF‑κB**‑, **MAPK**‑ und **C/EBP**‑Transkriptionsprogramme antreiben und so die Chemokinproduktion sowie die Rekrutierung von Neutrophilen fördern. Diese Achse koordiniert die Wirtsabwehr an Barriereoberflächen und gestaltet die Wechselwirkungen mit **IL‑23/STAT3**‑ und **TNF**‑Signalwegen zur Regulation entzündlicher Gen-Netzwerke. Eine fehlregulierte IL‑17A‑Aktivität wird häufig in Modellen chronischer Entzündung und Autoimmunität untersucht, darunter psoriasisähnliche Hautentzündung, entzündliche Darmerkrankungen und entzündliche Atemwegsreaktionen.
IL-17 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL17A-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-17 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL17A-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL17A-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-17-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL17A-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-17-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-17-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL17A-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.