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Huntingtin Double Nickase Plasmid (h) | sc-401441-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Huntingtin Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401441-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
HTT kodiert Huntingtin, ein großes zytosolisches und nukleäres Protein, das zur neuronalen Homöostase beiträgt, indem es an vesikulärem Transport, endosomaler Dynamik, transkriptioneller Regulation sowie Autophagie‑/Lysosomen‑Signalwegen beteiligt ist. Huntingtin interagiert mit der mikrotubuli-basierten Transportmaschinerie und mit Signalnetzwerken, die synaptische Funktionen, mitochondriale Integrität und Stressantworten beeinflussen. Eine Polyglutamin-Expansion innerhalb von Huntingtin stört die Proteostase und den zellulären Transport und führt zu einer selektiven Vulnerabilität von Neuronen im Striatum und Kortex. Diese HTT-assoziierten Mechanismen werden häufig genutzt, um Störungen neurodegenerationsrelevanter Signalwege zu modellieren, darunter veränderte Autophagie, beeinträchtigter axonaler Transport und transkriptionelle Dysregulation.
Huntingtin Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HTT-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HTT abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HTT-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HTT-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.