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HSFY1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-417414-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
HSFY1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-417414-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
HSFY1 (Heat-Shock-Transkriptionsfaktor, Y-chromosomal 1) kodiert ein Y-Chromosom-assoziiertes Mitglied der Heat-Shock-Faktor-Familie, das an Transkriptionsregulationsprogrammen beteiligt ist, die die zelluläre Proteostase unterstützen. Obwohl HSFY1 weniger gut charakterisiert ist als die kanonischen HSFs, wird es mit stressresponsiver Genexpression, der Aufrechterhaltung der Proteinfaltungs-Homöostase und Qualitätskontrollwegen in Verbindung gebracht, die Chaperon-Netzwerke und die Anpassung an proteotoxische Bedingungen koordinieren. Die Expression und genetische Variation von HSFY1 wurden im Kontext der männlichen Keimbahnbiologie untersucht; dabei wurden Zusammenhänge mit gestörter Spermatogenese und Y-chromosomal gekoppelten Infertilitätsphänotypen berichtet. Als transkriptioneller Regulator bietet HSFY1 einen gut zugänglichen Ansatzpunkt, um zu untersuchen, wie geschlechtsgebundene Regulatorfaktoren Stresssignale und den Zustand reproduktiver Zellen modulieren.
HSFY1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HSFY1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HSFY1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HSFY1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HSFY1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.