Date published: 2026-7-14

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Plasmide Double Nickase (h) GRIN1: sc-405452-NIC

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Fiches techniques
  • Espèces cibles: human
  • 20 µg d'ADN plasmidique purifié et prêt à transfecter; Jusqu'à 20 transfections
  • Le Plasmide Double Nickase (h) GRIN1 correspond à une paire de plasmides chacun codant la nucléase Cas9 mutante D10A et un ARN guide (gARN) cible de 20 nt specifique, élaboré pour le knockout optimal de l'expression d'un gène avec une plus grande spécificité que le plasmide KO CRISPR/Cas9 correspondant.
  • Les séquences des paires d'ARNg sont décalées de 20 pb environ pour induire avec la Cas9 une double entaille spécifique de l'ADN génomique, qui imite un DSB
  • L'un des plasmides de la paire contient un gène de résistance à la puromycine; l'autre plasmide de la paire contient un marqueur GFP pour confirmer visuellement la transfection
  • Le plasmide GRIN1 Double Nickase (h) et le plasmide GRIN1 Double Nickase (h2) codent pour des paires distinctes de gRNA ciblant GPRIN1. Un ou les deux modèles peuvent être disponibles
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    Plasmide Double Nickase (h) GRIN1

    sc-405452-NIC
    20 µg
    $410.00

    Plasmide Double Nickase (h2) GRIN1

    sc-405452-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    GPRIN1 (G protein-regulated inducer of neurite outgrowth 1) code une protéine de signalisation enrichie dans les neurones, impliquée dans l’extension des neurites, la maturation synaptique et le remodelage dépendant de l’activité. Elle participe à des cascades de signalisation couplées aux RCPG (GPCR) et interagit avec des processus du cytosquelette et du trafic vésiculaire qui façonnent la connectivité et l’excitabilité neuronales. Une dérégulation de GPRIN1 a été associée à des phénotypes neurodéveloppementaux et neuropsychiatriques, ce qui soutient son intérêt comme cible pour disséquer les mécanismes de la différenciation neuronale et de la fonction synaptique dans des modèles cellulaires humains.

    GRIN1 Le plasmide double nickase (h) se compose d'une paire de plasmides appariés, conçus pour une édition hautement spécifique du locus GPRIN1 dans les lignées cellulaires human. Chaque plasmide exprime une nickase Cas9 D10A et un sgRNA distinct ciblant des brins d'ADN opposés au sein de GPRIN1. Lorsqu'elles sont dirigées vers des sites adjacents sur des brins d'ADN opposés, les deux nickases génèrent des cassures simple brin décalées qui, ensemble, produisent une cassure double brin décalée, nécessitant une activité coordonnée sur la cible de la part des deux guides. La cassure d'ADN qui en résulte est résolue par les voies de réparation cellulaires endogènes, le plus souvent par jonction non homologue (NHEJ), ce qui conduit à des insertions ou des délétions qui perturbent la fonction de GPRIN1. En nécessitant l'engagement de deux ARNsg au locus cible, l'approche par double nick améliore la spécificité de l'édition et offre une stratégie CRISPR complémentaire pour les applications où un contrôle supplémentaire de la précision du ciblage est souhaité.

    Afin de faciliter l'identification efficace des cellules éditées, un plasmide code pour la GFP permettant la visualisation par fluorescence des populations transfectées, tandis que le plasmide compagnon porte un gène de résistance à la puromycine pour la sélection antibiotique. Ensemble, ces caractéristiques favorisent l'enrichissement efficace des populations co-transfectées et simplifient la validation des clones présentant une perturbation de GPRIN1.

    Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.