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gremlin-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401244-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
gremlin-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401244-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GREM1 kodiert Gremlin‑1, ein sezerniertes Glykoprotein der DAN‑Familie, das Knochenmorphogeneseproteine antagonisiert, insbesondere BMP2, BMP4 und BMP7, und dadurch die Output‑Signale der TGF‑β/BMP‑Signalgebung mitprägt. Durch die Modulation der rezeptorvermittelten SMAD‑Phosphorylierung reguliert Gremlin‑1 den epithelial‑mesenchymalen Crosstalk, den Umbau der extrazellulären Matrix, angiogene Programme sowie die Festlegung von Zelllinien während der Entwicklung und der Gewebereparatur. Eine fehlregulierte GREM1‑Expression wurde mit fibrotischem Remodeling und veränderter stromaler Signalgebung in Verbindung gebracht und wird häufig im Kontext von Tumor‑Mikroumgebungs‑Interaktionen und aberranten Morphogengradienten in der Krebsbiologie untersucht. Als diffusibler BMP‑Inhibitor stellt Gremlin‑1 einen gut zugänglichen Knotenpunkt dar, um parakrine Signalgebung und Pfadkompensation innerhalb von BMP/TGF‑β‑Netzwerken zu analysieren.
gremlin-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GREM1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GREM1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GREM1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GREM1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.