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Glycophorin C Double Nickase Plasmid (h) | sc-405123-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Glycophorin C Double Nickase Plasmid (h2) | sc-405123-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GYPC kodiert Glycophorin C, ein wichtiges Sialoglykoprotein der Membran menschlicher Erythrozyten, das über seine stark glykosylierte extrazelluläre Domäne zur Membranstabilität und zur Oberflächenladung beiträgt. Glycophorin C ist mit dem Membran‑Zytoskelett‑Netzwerk assoziiert, einschließlich Interaktionen, die mit Protein 4.1R verknüpft sind, und unterstützt die Verformbarkeit der roten Blutkörperchen unter Scherbelastung. Variationen oder ein Mangel an GYPC können die mechanischen Eigenschaften der Erythrozyten und die Antigenpräsentation verändern, was es für Studien zu erblichen Membrandefekten der Erythrozyten und zur Blutgruppenbiologie relevant macht. Als prominenter Oberflächenmarker roter Blutkörperchen dient Glycophorin C außerdem als Modell zur Untersuchung von Glykoprotein‑Transport, Membranorganisation und Wirt‑Pathogen‑Interaktionen an der Erythrozytenschnittstelle.
Glycophorin C Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GYPC-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GYPC abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GYPC-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GYPC-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.