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GluR-3 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403848-ACT | 20 µg | $397.00 |
GRIA3 kodiert die AMPA-Typ-Glutamatrezeptor-Untereinheit GluR-3, einen zentralen Determinanten der schnellen exzitatorischen synaptischen Transmission im zentralen Nervensystem. Als ligandengesteuerter Ionenkanal trägt GluR-3 zu einem aktivitätsabhängigen Na⁺/Ca²⁺-Fluss bei und prägt dadurch neuronale Depolarisation, synaptische Plastizität und die Erregbarkeit von Netzwerken. Die Funktion von GRIA3 überschneidet sich mit glutamatergen Signalprogrammen, die die Langzeitpotenzierung/Langzeitdepression sowie nachgeschaltete, calciumabhängige transkriptionelle Antworten regulieren. Eine dysregulierte Zusammensetzung oder ein gestörter Transport (Trafficking) von AMPA-Rezeptoren wurde mit neuroentwicklungsbedingten und neuropsychiatrischen Phänotypen in Verbindung gebracht, was die Untersuchung von GRIA3 in neuronaler Differenzierung, Netzwerkaktivität und krankheitsrelevanten Signalzuständen unterstützt.
GluR-3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen GRIA3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
GluR-3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des GRIA3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der GRIA3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen GluR-3-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native GRIA3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von GluR-3-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des GluR-3-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem GRIA3-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.