Plasmide CRISPR/Cas9 KO GGTase-Iβ (m2): sc-432542-KO-2

Présentation

Pggt1b code la sous-unité β de la géranylgéranyltransférase I (GGTase-Iβ), une enzyme essentielle qui catalyse la prénylation CaaX de protéines cibles afin de favoriser leur association à la membrane, leur trafic subcellulaire et les interactions protéine–protéine. Cette modification post-traductionnelle soutient des voies de signalisation clés régulées par de petites GTPases, notamment RHO, RAC et CDC42, influençant ainsi la dynamique du cytosquelette, le transport vésiculaire, la polarité cellulaire et la prolifération. La perturbation de la géranylgéranylation des protéines altère la protéostasie et les réseaux de transduction du signal, fréquemment étudiés dans le contexte de la signalisation oncogénique, de l’inflammation et des neurosciences. Dans les modèles murins, les modèles de perte de fonction de Pggt1b sont utiles pour analyser la régulation, dépendante de la prénylation, du comportement cellulaire et des interactions entre voies de signalisation.

Le GGTase-Iβ CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m2) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène Pggt1b dans les lignées cellulaires mouse. Chaque plasmide du pool co-exprime un sgRNA unique, ciblant un site distinct au sein du locus Pggt1b, ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes, et code pour la GFP afin de permettre l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès. Cette stratégie multi-guide augmente la probabilité d'induire des décalages de cadre ou des délétions produisant un knock-out fonctionnel, offrant ainsi une alternative plus robuste aux approches à guide unique. Les cassures double brin (DSB) induites à plusieurs sites sont résolues par jonction non homologue (NHEJ) ou, lorsqu'elles sont utilisées avec le modèle donneur HDR inclus, par réparation dirigée par homologie (HDR) à un site cible défini au sein du locus.

Lorsqu'il est utilisé en conjonction avec le donneur HDR exprimant la RFP, les fluorescences GFP et RFP peuvent être utilisées conjointement pour distinguer les populations de cellules transfectées de celles éditées, rationalisant ainsi les workflows de tri par cytométrie en flux et de sélection de clones.

Donneur de réparation dirigée par homologie (HDR) — Cassette de puromycine avec rapporteur RFP

Pour les applications nécessitant des clones knock-out confirmés et sélectionnables, le GGTase-Iβ plasmide HDR (m2) comprend une construction donneuse HDR contenant une cassette de résistance à la puromycine (PuroR) et un rapporteur protéine fluorescente rouge (RFP), flanquée de bras d'homologie spécifiques à un site cible Pggt1b défini.
Lorsqu'il est co-transfecté avec le plasmide GGTase-Iβ CRISPR/Cas9 KO (m2):

• La cassette PuroR-RFP s'intègre au site de coupure de Cas9 via HDR, perturbant le cadre de lecture ouvert Pggt1b.
  La fluorescence RFP fournit un indicateur visuel immédiat de la réussite de l'intégration, permettant l'identification ou le tri par fluorescence des cellules éditées avant ou parallèlement à la sélection par la puromycine.
  Les cellules éditées avec succès sont confirmées par leur résistance à la puromycine, ce qui réduit considérablement la charge de criblage des clones.
  Cette stratégie de sélection est idéale pour générer des lignées cellulaires KO clonales stables destinées à des études fonctionnelles en aval, au criblage de médicaments ou au développement de modèles.

Système de suppression de la cassette Cre-lox

La construction donneuse HDR comporte des sites loxP flanquant la cassette de sélection PuroR-RFP afin de permettre une suppression propre du marqueur après confirmation du clone. L'expression transitoire de la recombinase Cre via le vecteur Cre inclus Cre Vector: sc-418923 excise la cassette, laissant un site loxP résiduel minimal au sein du locus Pggt1b et éliminant les effets de confusion potentiels sur les tests en aval.
Cette approche en deux étapes :

• Minimise la perturbation de l'architecture locale de la chromatine et des éléments régulateurs voisins
  Restaure un contexte génomique quasi-naturel au niveau du locus édité
  Permet la réutilisation de la stratégie de sélection à la puromycine dans la même lignée cellulaire pour des modifications supplémentaires

Caractéristiques principales

• gRNA ciblant le ou les exons Pggt1b essentiels à la fonction GGTase-Iβ
  Co-expression de SpCas9 et de sgRNA à partir d'un seul plasmide pour une administration simplifiée
  Donneur HDR avec résistance à la puromycine pour une sélection positive des clones
  Cassette PuroR flanquée de loxP avec vecteur de recombinase Cre pour une suppression transparente du marqueur
  Fourni prêt à l'emploi pour une administration par transfection

Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.