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| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
GGTase-Iβ CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m2) | sc-432542-KO-2 | 20 µg | $397.00 | |||
GGTase-Iβ HDR Plasmid (m2) | sc-432542-HDR-2 | 20 µg | $445.00 |
Pggt1b kodiert die β‑Untereinheit der Geranylgeranyltransferase I (GGTase‑Iβ), eines essenziellen Enzyms, das die CaaX‑Prenylierung von Zielproteinen katalysiert und so deren Membranassoziation, subzellulären Transport und Protein‑Protein‑Interaktionen fördert. Diese posttranslationale Modifikation unterstützt zentrale Signalwege, die durch kleine GTPasen wie RHO, RAC und CDC42 reguliert werden, und beeinflusst damit Zytoskelettdynamik, Vesikeltransport, Zellpolarität und Proliferation. Eine Störung der Protein‑Geranylgeranylierung beeinträchtigt die Proteostase sowie Signaltransduktionsnetzwerke, die häufig im Kontext onkogener Signalgebung, Entzündung und Neurobiologie untersucht werden. In Mausmodellen eignen sich Pggt1b‑Loss‑of‑Function‑Systeme, um die prenylierungsabhängige Regulation zellulären Verhaltens und das Zusammenspiel von Signalwegen zu analysieren.
GGTase-Iβ CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Pggt1b-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Pggt1b-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das GGTase-Iβ HDR-Plasmid (m2) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Pggt1b Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem GGTase-Iβ CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Pggt1b-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.