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GDF-9B CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403596-ACT | 20 µg | $397.00 |
BMP15 kodiert den Wachstumsdifferenzierungsfaktor 9B (GDF-9B), ein von der Oozyte stammendes Mitglied der TGF-β-Superfamilie, das während der Follikulogenese die Proliferation und Differenzierung von Granulosazellen reguliert. GDF-9B signalisiert über BMP/SMAD-Signalwege und beeinflusst Transkriptionsprogramme, die das Wachstum ovarieller Follikel, die Kommunikation zwischen Oozyte und somatischen Zellen sowie den Umbau der extrazellulären Matrix koordinieren. Eine veränderte BMP15-Aktivität wird mit reproduktiven Phänotypen in Verbindung gebracht, darunter eine beeinträchtigte Ovarialfunktion und infertilitätsassoziierte Merkmale, was BMP15 für Studien zur Gonadenentwicklung und endokrinen Regulation relevant macht. Zudem bietet das Cross-Talk zwischen BMP15/GDF-9B und verwandten Liganden und Rezeptoren ein gut geeignetes Modell, um kontextabhängige Signalgebung innerhalb der TGF-β-Familie zu untersuchen.
GDF-9B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen BMP15-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
GDF-9B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des BMP15-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der BMP15-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen GDF-9B-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native BMP15-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von GDF-9B-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des GDF-9B-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem BMP15-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.