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G9a CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-430994 | 20 µg | $397.00 |
Das Mausgen *Ehmt2* kodiert die Histon-Lysin-Methyltransferase G9a, einen zentralen „Writer“ der H3K9-Mono- und -Dimethylierung, die zur Etablierung repressiver Chromatinzustände im gesamten Euchromatin beiträgt. G9a koordiniert Transkriptions-Silencing-Programme, die an der Embryonalentwicklung, der Linienfestlegung und der Aufrechterhaltung der Zellidentität beteiligt sind, indem es mit Chromatinregulatoren wie GLP (EHMT1) und heterochromatinassoziierten Faktoren zusammenwirkt. Über seine Effekte auf Chromatinzugänglichkeit und Genexpression beeinflusst EHMT2 DNA-Schadensantworten, das Replikationstiming und die epigenetische Stabilität. Eine fehlregulierte G9a-Aktivität und veränderte H3K9me2-Muster werden im Kontext der Tumorbiologie, neuroentwicklungsbezogener Phänotypen und der Regulation entzündlicher Gene umfassend untersucht, was *Ehmt2* zu einem zentralen Knotenpunkt für epigenetikfokussierte Forschung macht.
Das G9a CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Ehmt2-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Ehmt2-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Ehmt2 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die G9a-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Ehmt2-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der G9a-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.