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Fukutin CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-434202 | 20 µg | $397.00 | |||
Fukutin HDR Plasmid (m) | sc-434202-HDR | 20 µg | $445.00 |
Das Mausgen **Fktn** kodiert Fukutin, eine im Golgi-Apparat lokalisierte Glykosyltransferase, die für die posttranslationale Modifikation von **α‑Dystroglykan** und den korrekten Zusammenbau des **Dystrophin‑Glykoprotein‑Komplexes** erforderlich ist. Über die Regulation der Glykanreifung unterstützt Fukutin die Bindung an die extrazelluläre Matrix und die Membranstabilität in Skelettmuskel- und Nervengeweben und verknüpft damit die Funktion des sekretorischen Weges mit Zelladhäsion und Mechanotransduktion. Eine Störung der Fktn‑abhängigen Glykosylierung verändert die Ligandeninteraktionen von Dystroglykan und die Organisation der Basalmembran, wodurch Fktn einen zentralen Knotenpunkt in Signalwegen darstellt, die die Integrität von Muskelfasern und die Neuroentwicklung steuern. Entsprechend wird **FKTN** häufig im Kontext von Dystroglykanopathien sowie verwandten Modellen der Muskeldegeneration und Gehirnfehlbildungen untersucht.
Fukutin CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Fktn-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Fktn-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das Fukutin HDR-Plasmid (m) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Fktn Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem Fukutin CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Fktn-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.