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FAT2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402931-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
FAT2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402931-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FAT2 kodiert ein atypisches cadherinähnliches transmembranes Protein aus der FAT‑Protocadherin‑Familie, das zur Zell‑Zell‑Adhäsion und zur Organisation der epithelialen Architektur beiträgt. Über seine großen extrazellulären Cadherin‑Repeats und seine intrazellulären Signalübertragungsfähigkeiten ist FAT2 mit der Regulation der Zytoskelettdynamik und mit Prozessen der planaren Zellpolarität verknüpft, die Zellform, Migration und Gewebemorphogenese beeinflussen. Eine veränderte Funktion der FAT‑Familie wurde mit gestörter Polarität und Adhäsion in Verbindung gebracht, was Differenzierungsprogramme sowie das Gleichgewicht zwischen Proliferation und Kontaktinhibition beeinflussen kann. FAT2 wurde im Kontext der Krebsbiologie und der Entwicklungsregulation untersucht, in denen Veränderungen der Adhäsionssignalgebung und der Polaritätsnetzwerke für Krankheitsmechanismen relevant sind.
FAT2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FAT2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FAT2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FAT2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FAT2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.