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ephrin-A1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401309-ACT | 20 µg | $397.00 |
EFNA1 kodiert Ephrin-A1, einen GPI-verankerten Zelloberflächenliganden für EphA-Rezeptor-Tyrosinkinasen, der kontaktabhängige Signalübertragung vermittelt und dadurch Zellpositionierung, Grenzbildung und Gewebemusterung reguliert. Ephrin-A1/EphA-Interaktionen koordinieren bidirektionale Signale, die Rho-Familien-GTPasen, Zytoskelettdynamik, Umschlag von Adhäsionen und Migration beeinflussen; nachgeschaltet ergeben sich – abhängig vom zellulären Kontext – Effekte auf die Aktivität der MAPK- sowie der PI3K/AKT-Signalwege. In menschlichen Zellen wird EFNA1 mit angiogenem Remodeling, epithelialer Organisation und dem Crosstalk mit einem inflammatorischen Mikromilieu in Verbindung gebracht. Eine fehlregulierte Ephrin-A1-Signalgebung wurde in der Krebsbiologie mit verändertem Gefäßverhalten und invasiven Phänotypen assoziiert und ist damit ein nützlicher Knotenpunkt zur Untersuchung von Rezeptor‑Ligand‑Signalnetzwerken und mikroumgebungsabhängiger Zellmotilität.
ephrin-A1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen EFNA1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
ephrin-A1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des EFNA1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der EFNA1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen ephrin-A1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native EFNA1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von ephrin-A1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des ephrin-A1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem EFNA1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.