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E2A CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-423303 | 20 µg | $397.00 |
Tcf3 kodiert den basischen Helix-Loop-Helix-Transkriptionsfaktor E2A, einen zentralen Regulator der Lineage-Festlegung und von Differenzierungsprogrammen, insbesondere in hämatopoetischen und lymphoiden Kompartimenten. E2A bildet Dimere, die an E-Box-Motive binden und so Gennetzwerke steuern, die an Zellzykluskontrolle, Apoptose und dem zeitlichen Ablauf der Entwicklung beteiligt sind; funktionell ist E2A zudem in Signalzusammenhänge mit Notch-, Wnt/β-Catenin- und TGF-β-Signalwegen eingebunden. In Mausmodellen stört eine veränderte Tcf3-Aktivität die B- und T-Zellentwicklung und kann transkriptionelle Zustände so umformen, dass die Aufrechterhaltung von Stamm-/Vorläuferzellen beeinflusst wird. Eine Fehlregulation E2A-abhängiger transkriptioneller Schaltkreise wird häufig im Kontext onkogener Transkriptionsfaktor-Netzwerke und von Defekten in der Reifung von Immunzellen untersucht.
Das E2A CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Tcf3-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Tcf3-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Tcf3 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die E2A-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Tcf3-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der E2A-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.