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DEC1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402058-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
DEC1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402058-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
BHLHE40 kodiert den basischen Helix-Loop-Helix-Transkriptionsfaktor DEC1 (auch bekannt als BHLHE40/STRA13), einen kontextabhängigen Regulator der Genexpression, der hypoxische und zirkadiane Signale integriert. DEC1 ist an Transkriptionsprogrammen beteiligt, die nachgeschaltet an die Sauerstoffsensorik und zellulären Stress ablaufen, und beeinflusst über Interaktionen mit zentralen Komponenten der inneren Uhr sowie hypoxie-reaktiven Netzwerken die Zellzyklusprogression, Differenzierung und metabolische Anpassung. Durch die Modulation von Zielgenen, die an Proliferation, Apoptose und inflammatorischer Signalübertragung beteiligt sind, wird BHLHE40 mit veränderter Tumorbiologie, Immunzellfunktion und Reaktionen auf mikroumgebungsbedingten Stress in Verbindung gebracht. Diese Eigenschaften machen DEC1 zu einem nützlichen Knotenpunkt für die Untersuchung der transkriptionellen Kontrolle im Zusammenspiel von Hypoxie und Zirkadianrhythmik sowie in stressadaptiven Signalwegen in menschlichen Zellen.
DEC1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des BHLHE40-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von BHLHE40 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die BHLHE40-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit BHLHE40-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.