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DAGLβ CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-406084-ACT | 20 µg | $397.00 |
DAGLB kodiert die Diacylglycerol-Lipase Beta (DAGLβ), eine Serin-Hydrolase, die Diacylglycerol in 2-Arachidonoylglycerol (2-AG) umwandelt – einen wichtigen endocannabinoiden Lipidmediator. Durch die Kontrolle der 2-AG-Verfügbarkeit trägt DAGLβ zur Signalübertragung über Cannabinoid-Rezeptoren bei und koordiniert den Fluss lipidischer Second Messenger mit entzündlichen und metabolischen Signalwegen. Die DAGLβ-Aktivität wird häufig im Kontext der Aktivierung von Immunzellen, der Lipidsignalgebung in Makrophagen und der Regulation der Produktion Arachidonsäure-abgeleiteter Mediatoren untersucht. Fehlregulierte Endocannabinoid- und Eicosanoid-Netzwerke unter Beteiligung von DAGLβ wurden mit Entzündungszuständen, neuroimmunem Crosstalk und kardiometabolischen Phänotypen in Verbindung gebracht und stützen mechanistische Forschung zu krankheitsassoziierter Lipidsignalgebung.
DAGLβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen DAGLB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
DAGLβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des DAGLB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der DAGLB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen DAGLβ-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native DAGLB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von DAGLβ-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des DAGLβ-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem DAGLB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.