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CYP1A2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419898-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CYP1A2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419898-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen **Cyp1a2** kodiert das Cytochrom-P450-Enzym **CYP1A2**, eine mikrosomale Monooxygenase, die verschiedenste endogene und xenobiotische Substrate oxidiert und zur Aufrechterhaltung der chemischen Homöostase beiträgt. Seine Expression wird durch ligandaktivierte Transkriptionsprogramme reguliert, insbesondere über den Signalweg des Aryl-Hydrocarbon-Rezeptors (AhR), der Umweltexpositionen mit einer induzierbaren Arzneistoff-metabolisierenden Kapazität verknüpft. Die CYP1A2-Aktivität trägt zur hepatischen Redoxbalance bei und kann während der Biotransformation die Bildung reaktiver Metaboliten sowie oxidative Stressantworten beeinflussen. Eine veränderte Funktion oder Regulation von **Cyp1a2** ist daher relevant für Untersuchungen zur Empfindlichkeit gegenüber Toxikanten, zur pharmakokinetischen Variabilität und zu Gen-Umwelt-Interaktionen in Mausmodellen.
CYP1A2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Cyp1a2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Cyp1a2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Cyp1a2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Cyp1a2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.