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CYP1A1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419897-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CYP1A1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419897-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Cyp1a1** kodiert **Cytochrom P450 1A1 (CYP1A1)**, eine mikrosomale Monooxygenase, die den oxidativen Metabolismus von Xenobiotika und endogenen Substraten katalysiert, einschließlich der Bioaktivierung und Entgiftung polyzyklischer aromatischer Kohlenwasserstoffe. CYP1A1 ist ein kanonischer nachgeschalteter Effektor der **Aryl-Hydrocarbon-Rezeptor-(AHR)-Signalübertragung** und verknüpft Umweltliganden mit Transkriptionsprogrammen, die den Phase‑I‑Metabolismus regulieren und mit Phase‑II‑Konjugationswegen koordiniert sind. Seine Aktivität beeinflusst das zelluläre Redoxgleichgewicht durch die Bildung reaktiver Metaboliten und die Modulation von oxidativen Stressantworten, mit Konsequenzen für DNA-Schadenssignalisierung und Entzündung. Eine dysregulierte CYP1A1-Expression oder -Aktivität wird häufig als Biomarker für Störungen des AHR-Signalwegs verwendet und ist relevant für Studien zur Empfindlichkeit gegenüber Toxikanten, zum Karzinogenmetabolismus und zur gewebespezifischen metabolischen Anpassung.
CYP1A1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Cyp1a1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Cyp1a1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Cyp1a1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Cyp1a1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.