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cyclin F Double Nickase Plasmid (m) | sc-419514-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
cyclin F Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419514-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Ccnf** kodiert **Cyclin F**, ein F‑Box‑Protein, das als Substraterkennungs-Komponente des **SCF-(SKP1–CUL1–F‑Box)-E3-Ubiquitinligasekomplexes** fungiert und den Zellzyklusfortschritt mit der ubiquitinabhängigen Proteostase verknüpft. Cyclin F trägt zur Koordination der Übergänge **S/G2** und **G2/M** bei, indem es spezifische Regulatoren der DNA-Replikation und des Eintritts in die Mitose für den proteasomalen Abbau markiert und dadurch Genomstabilität und Checkpoint-Kontrolle beeinflusst. Über diese Funktionen ist es mit Signalwegen verknüpft, die Replikationsstressantworten, die Zentrosomenhomöostase und die DNA-Schadenssignalgebung steuern. Eine Fehlregulation der durch Cyclin F vermittelten Ubiquitinierung wurde mit beeinträchtigter Zellzykluskontrolle und neurodegenerationsbezogenen Mechanismen in Verbindung gebracht, was seine Relevanz für Studien zu proliferativen Störungen und neuronaler Vulnerabilität unterstreicht.
cyclin F Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Ccnf-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Ccnf abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Ccnf-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Ccnf-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.