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CSA Double Nickase Plasmid (h) | sc-403428-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CSA Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403428-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ERCC8 kodiert das humane CSA-Protein, einen WD40-Repeat-Faktor, der zusammen mit DDB1, CUL4A und RBX1 den CRL4^CSA-E3-Ubiquitin-Ligasekomplex bildet und so die transkriptionsgekoppelte Nukleotidexzisionsreparatur (TC-NER) koordiniert. CSA trägt zur Auflösung von Läsionen bei, die ein Stalling der RNA-Polymerase II verursachen, indem es Reparatur- und Chromatin-Remodeling-Aktivitäten rekrutiert und den ubiquitinabhängigen Abbau von Komponenten der Schadensantwort fördert. Über diese Funktionen unterstützt CSA die Genomstabilität, die Erholung der Transkription nach UV-induzierten Schäden sowie die Aufrechterhaltung der zellulären Homöostase unter genotoxischem Stress. Pathogene Störungen von ERCC8 sind mit dem Cockayne-Syndrom, Gruppe A, assoziiert, einer DNA-Reparaturerkrankung, die als Modell zur Untersuchung von TC-NER-Defekten, Transkriptionsstress und neuroentwicklungsbedingter Vulnerabilität dient.
CSA Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ERCC8-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ERCC8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ERCC8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ERCC8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.