Date published: 2026-7-11

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CRX CRISPR/Cas9 KO质粒 (m): sc-419817

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说明书
  • 针对种属:mouse
  • 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA,最多可供20次转染
  • CRX CRISPR/Cas9 基因敲除(KO)质粒(m) 是一组质粒混合物,每种质粒均编码 Cas9 核酸酶及针对特定靶点的 20 核苷酸引导 RNA(gRNA),其设计基于 GeCKO v2 文库中的序列,旨在实现最高的基因敲除效率
  • gRNA序列引导Cas9在CRX基因组位点诱导位点特异性双链断裂(DSBs),从而通过非同源末端连接(NHEJ)实现基因敲除
  • 嘌呤霉素抗性基因和 RFP 基因两侧有 LoxP 位点,因此在建立稳定的基因敲除细胞系后,可以通过 Cre 重组酶(Cre 向量:sc-418923)去除选择标记。
  • 转染后,基因敲除效率可以用抗体:CRX: sc-377138,通过WB, IF或者IHC分析
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    订购信息

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    CRX CRISPR/Cas9 KO质粒 (m)

    sc-419817
    20 µg
    $397.00

    概述

    Crx 编码锥杆视网膜同源盒(CRX)转录因子,是小鼠视网膜中光感受器分化与维持的主调控因子。CRX 通过结合顺式调控元件,驱动光转导、外节生物发生以及突触功能所必需基因的表达,并与其他视网膜谱系因子共同整合转录调控网络。CRX 依赖的基因程序一旦受扰,会损害杆细胞和锥细胞的成熟与存活,从而将该通路与遗传性视网膜退行性变的表型联系起来。因此,Crx 被广泛用于研究视网膜发育机制、光感受器基因调控,以及视觉系统疾病模型中的基因型–表型关系。

    CRX CRISPR/Cas9 KO质粒(m)是一组旨在针对性地破坏mouse细胞系中Crx基因的质粒池。每条质粒均共表达一种独特的单引导RNA(sgRNA),该sgRNA针对Crx基因内的特定位点,并携带来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶。这些质粒还编码GFP,可通过荧光显微镜或流式细胞术对成功转染的细胞进行荧光标记和富集。

    多引导设计提高了在Cas9介导的双链断裂形成后,产生破坏Crx开放阅读框的插入或缺失(indels)的概率。CRISPR/Cas9系统引入的DNA断裂通过内源性非同源末端连接(NHEJ)途径修复,通常会导致移码突变,从而使CRX蛋白表达失活。

    该CRISPR敲除系统能够高效构建Crx缺失的细胞模型,用于CRX信号传导研究、功能基因组学研究、癌症生物学研究以及人类细胞系中治疗反应的评估。

    主要特点

    • 针对对 CRX 功能至关重要的 Crx 外显子的 sgRNA
      通过单质粒共表达 SpCas9 和 sgRNA 以简化递送过程
      GFP 报告基因用于识别转染细胞
      针对多个 Crx 基因组位点的质粒池以提高敲除效率
      兼容转染递送

    设计变体

    CRISPRs +/- HDR

    • 由 CRX CRISPR/Cas9 KO 质粒 (m) 和 CRX CRISPR/Cas9 KO 质粒 (m2) 编码的 gRNA 分别靶向 Crx 基因座内的不同位点。可能提供其中一种或两种靶向设计。具体供应情况请参见相关产品。
      由 CRX HDR 质粒(m)编码的 HDR 供体构建体以及 CRX HDR质粒(m2)编码的HDR供体构建体包含一个嘌呤霉素抗性盒和一个RFP报告基因,其两侧由Crx同源臂包围,以支持在与CRISPR/Cas9敲除设计对应的特定Crx靶位点进行同源导向修复。HDR供体的供应情况可能有所不同。请查看“相关产品”了解供应情况。

    仅供研究使用。不用于诊断或治疗。