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CROP Double Nickase Plasmid (h) | sc-412243-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CROP Double Nickase Plasmid (h2) | sc-412243-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
LUC7L3 kodiert CROP, ein SR-verwandtes RNA-bindendes Protein, das zum Aufbau des Spleißosoms und zur Genauigkeit des prä-mRNA-Spleißens beiträgt. CROP ist an der ko- und posttranskriptionellen RNA-Prozessierung beteiligt und beeinflusst die alternative Exonnutzung sowie die Transkriptstabilität in Signalwegen, die mit Zellzykluskontrolle, Stressantworten und Differenzierung verknüpft sind. Fehlregulierte Spleißprogramme unter Beteiligung von LUC7L3 wurden mit veränderten Genexpressionsnetzwerken in mehreren krankheitsrelevanten Kontexten in Verbindung gebracht, darunter Krebsbiologie und inflammatorische Signalgebung. Als menschlicher Spleißfaktor wird CROP häufig untersucht, um zu verstehen, wie Störungen der RNA-Prozessierung die Proteomzusammensetzung und zelluläre Phänotypen verändern.
CROP Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LUC7L3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LUC7L3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LUC7L3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LUC7L3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.