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CKR-5 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402548-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CKR-5 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402548-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CCR5 kodiert den Chemokinrezeptor CKR-5, einen siebenfach transmembranären GPCR, der auf Subpopulationen von T‑Zellen, Makrophagen und dendritischen Zellen exprimiert wird und Liganden wie CCL3, CCL4 und CCL5 bindet, um die Chemotaxis von Leukozyten zu steuern. Die CKR-5-Signalübertragung aktiviert heterotrimere G‑Proteine sowie nachgeschaltete PI3K–AKT-, PLCβ–Ca²⁺- und MAPK-Signalwege und reguliert dadurch Migration, Adhäsion und entzündliche Zytokinprogramme. Unterschiede in Expression oder Funktion von CCR5 beeinflussen die Wanderung von Immunzellen und wurden umfassend im Kontext mukosaler Entzündungen und der Immunhomöostase untersucht. CCR5 ist außerdem ein gut etablierter Wirtsfaktor in der Biologie des viralen Zelleintritts und daher ein häufiges Ziel mechanistischer Studien zur infektionsassoziierten Zellsignalübertragung und Rezeptorregulation.
CKR-5 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CCR5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CCR5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CCR5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CCR5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.