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Chr-A Double Nickase Plasmid (h) | sc-400405-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Chr-A Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400405-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CHGA kodiert Chromogranin A (Chr-A), ein saures Protein sekretorischer Granula, das in neuroendokrinen Zellen stark exprimiert wird und zusammen mit Peptidhormonen und Neurotransmittern gespeichert wird. Chr-A trägt zur Biogenese dichter Kernvesikel (dense-core vesicles), zur regulierten Sekretion und zur Prohormon-Prozessierung bei und dient als Vorläufer bioaktiver Peptide wie Vasostatin und Catestatin, die die neuroendokrine Signalübertragung modulieren. Über seine Funktionen im Vesikeltransport und in der reizgekoppelten Exozytose ist CHGA mit Signalwegen verknüpft, die die Reifung sekretorischer Granula und die calciumabhängige Freisetzung steuern. Veränderte CHGA-Expression und Muster der Chr-A-Prozessierung werden häufig als molekulare Readouts in Studien zur neuroendokrinen Differenzierung und zu tumorassoziierten sekretorischen Phänotypen verwendet.
Chr-A Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CHGA-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CHGA abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CHGA-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CHGA-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.