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CD8-β Double Nickase Plasmid (h) | sc-400950-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CD8-β Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400950-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CD8B kodiert die CD8-β-Kette, ein transmembranes Glykoprotein, das mit CD8-α zum CD8-Korezeptor auf zytotoxischen T-Lymphozyten dimerisiert. Durch die Bindung an MHC-Klasse-I-Moleküle erhöht CD8 die Empfindlichkeit des T-Zell-Rezeptors (TCR) und rekrutiert die Src-Familienkinase LCK, um nachgeschaltete Signalkaskaden zu verstärken, die Aktivierung, Effektordifferenzierung und die Bildung der immunologischen Synapse prägen. Die CD8B-Expression und die Zusammensetzung des CD8-Korezeptors beeinflussen antigenspezifische zytotoxische Antworten, Programme der T-Zell-Erschöpfung und die Dynamik der Immunüberwachung. Eine veränderte Funktion der CD8-Linie ist relevant für Studien zu chronischen Virusinfektionen, Tumorimmunologie und Immunfehlregulation, bei denen CD8-Signalschwellen Phänotyp und Funktion beeinflussen.
CD8-β Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CD8B-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CD8B abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CD8B-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CD8B-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.