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CD138/SDC1/Syndecan-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423235-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CD138/SDC1/Syndecan-1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423235-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Sdc1 kodiert Syndecan-1 (CD138), ein transmembranöses Heparansulfat-Proteoglykan, das Zell-Zell- und Zell-Matrix-Adhäsion, die Präsentation von Wachstumsfaktoren sowie die Sequestrierung von Chemokinen an der Zelloberfläche reguliert. Durch die Bindung an Komponenten der extrazellulären Matrix und an Liganden wie Mitglieder der FGF- und VEGF-Familie moduliert CD138 Signalwege einschließlich MAPK/ERK, PI3K/AKT und der integrinabhängigen Dynamik fokaler Adhäsionen und beeinflusst dadurch Proliferation, Migration und die Organisation epithelialer Barrieren. In Mausgeweben trägt Sdc1 über die Kontrolle inflammatorischer Signale und das Remodeling der extrazellulären Matrix zu Immunzellinteraktionen und Wundheilung bei. Eine fehlregulierte CD138-Expression oder -Abspaltung (Shedding) ist mit veränderten Adhäsions- und Signalzuständen verbunden, die für die Krebsbiologie, Entzündungsforschung und Untersuchungen der Gewebehomöostase relevant sind.
CD138/SDC1/Syndecan-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Sdc1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Sdc1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Sdc1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Sdc1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.