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caspase-9 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400257-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-9 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400257-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASP9 kodiert für Caspase-9, eine Initiator-Caspase, die als Reaktion auf zellulären Stress und DNA-Schäden die intrinsische (mitochondriale) apoptotische Kaskade aktiviert. Nach der Freisetzung von Cytochrom c wird Caspase-9 zusammen mit APAF1 in das Apoptosom rekrutiert, was zur proteolytischen Aktivierung von Effektor-Caspasen wie CASP3 und CASP7 und zu einer weitreichenden Spaltung von Substratproteinen führt. Dieser Signalweg überschneidet sich mit der Regulation durch die BCL2-Familie, p53-abhängigen Stressantworten sowie der Permeabilisierung der äußeren Mitochondrienmembran und prägt dadurch Entscheidungen über Zellschicksal und Gewebehomöostase. Eine fehlregulierte CASP9-Signalübertragung wurde mit veränderten Apoptoseschwellen in der Krebsbiologie, neurodegenerativen Mechanismen und Überlebensphänotypen von Immunzellen in Verbindung gebracht.
caspase-9 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASP9-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASP9 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASP9-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASP9-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.