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caspase-8 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400147-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-8 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400147-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASP8 kodiert Caspase‑8, eine initiatorische Caspase, die die Signalübertragung von Todesrezeptoren über die proteolytische Aktivierung nachgeschalteter Effektor‑Caspasen mit der Ausführung der Apoptose koppelt. Sie ist ein zentraler Bestandteil der extrinsischen Apoptose, die durch TNFRSF‑Rezeptoren wie FAS und TNFR1 vermittelt wird, und ist zudem in angeborene Immunwege eingebunden, die den Crosstalk mit Inflammasomen und die Zytokinprozessierung steuern. Die Aktivität von Caspase‑8 beeinflusst das Gleichgewicht zwischen Apoptose, Nekroptose und entzündlichem Zelltod, indem sie die RIPK1/RIPK3‑Signalgebung und die cFLIP‑abhängige Komplexassemblierung moduliert. Eine Fehlregulation von CASP8 wurde mit veränderter Immunhomöostase, defekter Lymphozytenapoptose und Tumorzell‑Überlebensmechanismen in Verbindung gebracht, die die Empfindlichkeit gegenüber Todesrezeptor‑Liganden beeinflussen.
caspase-8 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASP8-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASP8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASP8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASP8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.