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caspase-7 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401301-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-7 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401301-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASP7 kodiert die Caspase-7, eine ausführende Cystein-Aspartat-Protease, die während der intrinsischen und extrinsischen apoptotischen Signalübertragung nachgeschaltet von Initiator-Caspasen aktiviert wird. Nach ihrer Prozessierung spaltet Caspase-7 ein breites Spektrum an Substraten, um Chromatinkondensation, Umbau des Zytoskeletts und die geordnete Demontage der Zelle voranzutreiben, und wirkt dabei im Zusammenspiel mit Caspase-3. Die CASP7-Aktivität ist mit mitochondrialen Stressantworten, Todesrezeptor-Signalwegen und inflammatorischen Kontexten verknüpft, in denen apoptotische Proteolyse die Gewebehomöostase mitprägt. Eine dysregulierte Caspase-7-Signalgebung wurde mit veränderten Schwellen der Zelltodauslösung in der Krebsbiologie, bei Neurodegeneration und bei immunbezogenen Pathologien in Verbindung gebracht, was CASP7 zu einem nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien der Apoptose macht.
caspase-7 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASP7-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASP7 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASP7-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASP7-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.